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Complexe Acinetobacter baumanii
- Acinetobacter calcoaceticus
- Acinetobacter baumanii
- Acinetobacter pittii
- Acinetobacter nosocomialis
- Acinetobacter diijkshoorniae
- Acinetobacter seifertii
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Classification :
- Proteobacteria
- Gammaproteobacteria
- Pseudomonadales
- Moraxellaceae
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Examen direct :
- Coccobacilles Gram négatif en diplocoques résistants à la décoloration
- Parfois capsulés
- Très polymorphes
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Culture :
- Morphologie : petites colonies translucides non pigmentées
- souches rugueuses : absence d'une capsule
- souches muqueuses : présence d'une capsule
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Habitat naturel :
- Flores commensales (Homme + animaux) :
- salivaire
- urinaire
- cutanée (localisations humides ++)
- Colonisation en milieu hospitalier :
- de la flore commensale des patients (durée = plusieurs mois) : peau, pharynx, tube digestif
- sur les surfaces sèches ou humides à proximité du patient (lits, fauteuils, lampes, lavabo)
- Hypothèse d’un réservoir environnemental
-
Facteurs de virulence :
- Protéine A (un des constituants du lipopolysaccharide) : propriétés d’endotoxine
- Systèmes d’adhésion à la matrice extracellulaire
- Systèmes de captation du fer : acinetobactine
- Formation de biofilms
- Production de molécules signal ou « quorum sensing »
- Induction de la mort des cellules par apoptose
- Systèmes de sécrétion de protéines
-
Épidémiologie :
- Contexte hospitalier = infections nosocomiales (services les plus touchés : soins intensifs, réanimation, grands-brûlés…)
- Bactérie opportuniste
- Transmission :
- directe par manuportage
- indirecte via du matériel souillé
- Épidémies dues à des souches multirésistantes
- Facteurs de risque :
- geste chirurgical ou de réanimation invasif
- traitement antibiotique
- hospitalisation en soins intensifs
- Responsable de 10% des infections nosocomiales
- Mortalité : 10 à 20%
-
Pathogénicité :
- Infections communautaires : infections pulmonaires graves (rares, terrain particulier)
- Infections nosocomiales :
- infections sur plaies
- infections sur cathéters
- bactériémies
- infections respiratoires
- infections urinaires
- Autres infections (rares) :
- pleurésies
- péritonites (patients dialysés)
- méningites
- ostéomyélites
- endocardites
-
Prélèvement :
- Matériel étranger (cathéters, prothèses)
- Sang pour hémocultures
- Liquides de ponction
- Suppurations diverses
- Prélèvements respiratoires
- Urines
- Prélèvements cutanés
Réalisation de l'examen direct
-
Mise en culture :
- Bactérie non exigeante
- Respiration : aérobie stricte
- Milieux : milieux usuels, milieux chromogènes
- Incubation : 37°C, air ambiant (développement possible à 44°C)
-
Identification :
- Caractéristiques antigéniques :
- 19 biotypes
- 34 sérovars
- pas d’intérêt en pratique
- Caractéristiques biochimiques d'orientation :
- catalase positive
- oxydase positive
- MALDI-TOF couplé à la spectrométrie de masse
- Galeries d'identification bactérienne
- PCR simplex (détection du gène blaOXA51-like codant l’oxacillinase naturelle)
- PCR multiplex (détection du gène gyrB)
- Typage de la souche à visée épidémiologique seulement (7 clones en Europe)
-
Résistances naturelles :
- Céphalosporinase chromosomique peu inductible ADC
- Oxacillinase chromosomique naturelle OXA-51 (ou variant : OXA-69, OXA-66)
- Porines : imperméabilité naturelle associée à une pompe à efflux (résistance au triméthoprime)
- Résistance naturelle à l’ertapénème, à la fosfomycine, à la norfloxacine, aux furanes et peu sensible à l’aztréonam
- Carbapénémases = souches ABRI (A. baumanii résistant à l’imipénème)
- β-lactamases à spectre étendu
- Céphalosporinases
- Pénicillinases
Résistances acquises :
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Traitement curatif :
- 1ère intention : ticarcilline + aminoside
- 2ème intention : ceftazidime ou céfépime + aminoside
- Alternative thérapeutique : antibiotique de la famille des tétracyclines
- Souche résistante : traitement adapté en fonction de l’antibiogramme
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Prophylaxie :
- Contrôle de l'immunodépression
- Respect des mesures d'hygiène des mains, bon usage des gants
- Respect des bonnes pratiques d'hygiène hospitalière
- Mesures d’isolement des patients : isolement géographique strict ou regroupement des patients infectés
- Dépistage de colonisation des patients à risque (prélèvements cutanés, rectaux et pharyngés)
- Dépistage systématique des patients contact d’un patient infecté
- Fermeture d’un lit, de chambres, d’un service