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Trypanosoma brucei

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3 sous-espèces :
- T. brucei subsp brucei : parasite du bétail non infectant pour l’homme
- T. brucei subsp gambiense : maladie du sommeil dans sa forme chronique
- T. brucei subsp rhodesiense : maladie du sommeil dans sa forme aiguë

    Épidémiologie :
  • Répartition : Afrique noire
  • Réservoir : Homme (T. brucei subsp. gambiense), porcs, antilopes (T. brucei subsp. rhodesiense)
  • Transmission vectorielle : piqûre d’une glossine mâle ou femelle hématophage (mouche Tsé-Tsé)
  • Habitat de la glossine : cours d’eau, lacs, forêts, savanes arbustives
    Morphologie du trypomastigote :
  • Taille : 23 à 30 μm
  • Forme présente dans le sang des patients infectés
    Cycle évolutif :
  • Repas sanguin de la glossine : aspiration des trypomastigotes

  • Cycle chez la glossine (durée = 15 jours à 1 mois) :
    • Migration des trypanosomes dans l’intestin de la mouche
    • Transformation des trypomastigotes en trypomastigotes procycliques (forme non infectieuse) qui se multiplient (division binaire)
    • Migration des trypomastigotes procycliques vers les glandes salivaires puis transformation en épimastigotes (adhésion aux glandes salivaires)
    • Transformation des épimastigotes en trypomastigotes métacycliques (forme infectieuse)
    • Injection des trypomastigotes métacycliques dans le sang de l’hôte lors du repas sanguin

  • Cycle chez l’hôte :
    • Multiplication des trypomastigotes dans le sang et la lymphe
    • Passage possible dans le liquide céphalorachidien
    Diagnostic clinique :
  • Agent de la maladie du sommeil : mortelle en l’absence de traitement
    • T. brucei subsp. gambiense : forme chronique
    • T. brucei subsp. rhodesiense : forme aiguë à début brutal

  • Incubation : 8 à 10 jours

  • Début : apparition d’un chancre (trypanome)
    • Localisation : nuque +++
    • Chancre avec induration sous-cutanée au point de piqûre
    • Rarement visible ou détectable
    • Adénopathie régionale satellite
    • Signes associés : hyperthermie, céphalées, insomnie nocturne
    • Durée : 2 à 3 semaines

  • Phase lymphaticosanguine (stade 1) : quelques semaines à années après le chancre
    • Hperthermie irrégulière avec asthénie et insomnies
    • Prurit cutané avec trypanides (éruptions érythémateuses, papuleuses ou maculeuses) difficiles à repérer sur peau noire
    • Hépatomégalie, splénomégalie, adénopathies (cervicales, supraclaviculaires +++)
    • Oedèmes des membres supérieurs et inférieurs, œdème de la face
    • Atteintes cardiaques : hypotension artérielle, tachycardie, arythmie

  • Phase de polarisation cérébrale ou méningoencéphalitique (stade 2) :
    • Apparition d’une méningo-encéphalite avec hypersomnie diurne (maladie du sommeil)
    • Prurit intense avec lésions de grattage caractéristiques
    • Dysfonction endocrinienne (thyroïdienne, génitale, troubles du rythme du cortisol…)
    • Troubles moteurs et de la coordination
    • Hyperesthésies
    • Troubles psychiatriques (hallucinations et troubles de l’humeur)
    • Troubles de la régulation thermique

  • Encéphalite démyélinisante (stade terminal) : évolution vers la cachexie, le coma puis le décès
    Prélèvement :
  • Sang
  • Suppuration d’un trypanome
  • Biopsie ganglionnaire
  • Liquide céphalorachidien
  • Ponction du chancre
  • Moelle osseuse

    Perturbations biologiques :
  • Troubles hématologiques : anémie, hyperleucocytose, plasmocytose
  • Sur frottis médullaire : observation de cellules de Mott

    Identification :
  • Concentration du sang et du liquide céphalorachidien avant prise en charge
  • Observation à l’état frais du prélèvement
  • Sur frottis sanguin après coloration (MGG ou acridine orange) : parasitémie faible et variation en vagues, nécessite un observateur expérimenté
  • Examen du liquide céphalorachidien (obligatoire si présence de trypanosomes dans le sang) :
    • Dénombrement des leucocytes (hyperleucorachie en stade 2)
    • Recherche des trypanosomes (positive en stade 2)
  • Culture (laboratoires spécialisés) : milieu NNN (Novy-MacNeal-Nicolle)
  • Sérologie :
    • Recherche des immunoglobulines spécifiques
    • Techniques : immunofluorescence indirecte, test immunoenzymatique
    • Test CATT (agglutination) : utilisé pour le dépistage de masse de l’infection à T. brucei subsp. gambiense en zone d’endémie (positivité possible 3 ans post-traitement)
  • Réalisation d’une PCR (sur sang ou LCR)
    Éléments de traitement :
  • Stade 1 :
    • T. brucei subsp. gambiense : pentamidine iséthionate (voie intraveineuse)
    • T. brucei subsp. rhodesiense : suramine (voie intraveineuse)

  • Stade 2 :
    • T. brucei subsp. gambiense : éflornithine (voie intraveineuse)
    • T. brucei subsp. rhodesiense : mélarsopol (voie intraveineuse)
    Prophylaxie :
  • Suivi post-thérapeutique des patients pendant 18 à 24 mois : ponction de lombaire de contrôle tous les 6 mois
  • Protection des animaux d’élevage : barrières imprégnées d’insecticides, animaux lavés avec des solutions décontaminantes…
  • Lutte anti-vectorielle : pièges, insecticides
  • Éducation sanitaire des populations à risque et des équipes médicales (diagnostic et traitement les plus précoces possibles)