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Burkholderia cepacia (Complexe)
20 espèces dans le complexe :
- Burkholderia cepacia
- Burkholderia multivorans
- Burkholderia cenocepacia
- Burkholderia stabilis
- Burkholderia vietnamiensis
- Burkholderia dolosa
- Burkholderia ambifaria
- Burkholderia anthina
- Burkholderia pyrrocinia
- Burkholderia ubonensis
- Burkholderia latens
- Burkholderia diffusa
- Burkholderia arboris
- Burkholderia seminalis
- Burkholderia metallica
- Burkholderia contaminans
- Burkholderia lata
- Burkholderia pseudomultivorans
- Burkholderia stagnalis
- Burkholderia territorii
-
Classification :
- Proteobacteria
- Betaproteobacteria
- Burkholderiales
- Burkholderiaceae
-
Examen direct :
- Bacilles Gram négatif
- Asporulés
- État frais : mobilité
-
Culture :
- Morphologie :
- Colonies pourpres avec un halo jaune (milieu BCSA), jaunes avec un halo jaune (milieu OFPBL) ou grises avec un halo rose (milieu PC)
-
Habitat naturel :
- Environnement (sols)
- Environnement hospitalier
- Colonisation de la flore commensale respiratoire des patients atteints de mucoviscidose (2% des patients)
-
Facteurs de virulence :
- Gènes de virulence regroupés en îlots de pathogénicité
- Nombreux facteurs de virulence décrits : adhésines, sidérophores, enzymes, formation de biofilms
- Adaptation très rapide à l’environnement (survie en milieu hostile)
-
Épidémiologie :
- Bactéries opportunistes
- Bactéries responsables d’épidémies et d’infections nosocomiales
- Facteurs de risque d’infection :
- Pathologie sous-jacente (mucoviscidose, cancer, hémopathie maligne)
- Hospitalisation en soins intensifs
- Immunodépression
- Contamination de l’homme par l’environnement, transmission interhumaine possible
-
Pathogénicité :
- Infections respiratoires du patient atteint de mucoviscidose (majoritairement B. cenocepacia et B. multivorans) :
- Insuffisances respiratoires
- Syndrome cepacia : pneumonie nécrosante +/- bactériémie
- Infections disséminées post-transplantation pulmonaire
- Infections chez les patients immunodéprimés :
- Bactériémies
- Infections pulmonaires
- Infections urinaires
- Péritonites
- Arthrites
-
Prélèvement :
- Prélèvements respiratoires
- Sang pour hémocultures
- Liquides de ponction
- Suppurations diverses
- Urines
Réalisation de l'examen direct
-
Mise en culture :
- Respiration : aérobie stricte
- Milieux sélectifs (inhibition de la flore commensale) : gélose BCSA, gélose OFPBL, gélose BC
- Incubation : 37°C, air ambiant, pendant 5 jours
-
Identification :
- Caractéristiques biochimiques d'orientation :
- Catalase positive
- MALDI-TOF couplé à la spectrométrie de masse
- Galeries d'identification bactérienne
- Séquençage du gène recA (détermination de l’espèce – laboratoires spécialisés)
- Typage par biologie moléculaire à visée épidémiologique (laboratoires spécialisés)
-
Résistances naturelles : nombreuses
- Mécanismes : efflux, imperméabilité, β-lactamases (céphalosporinase + pénicillinase naturelles, carbapénémases acquises)
- Colistine
- Polymyxine B
- Céphalosporines de 1ère et 2ème génération
- Céphalosporines de 3ème génération : céfotaxime, ceftriaxone
- Ticarcilline
- Carbapénèmes : ertapénème, imipénème
- Aztréonam
- Fluoroquinolones
- Souches multirésistantes chez les patients atteints de mucoviscidose
- Ceftazidime
- Témocilline
- Méropénème
- Cotrimoxazole
- Doxycycline
Résistances acquises :
Antibiotiques généralement sensibles :
-
Traitement curatif :
- Choix des molécules selon le site de l'infection et l'antibiogramme
- Association de 2 à 3 antibiotiques
-
Prophylaxie :
- Prévention des transmissions croisées (patients atteints de mucoviscidose) :
- Hygiène des mains et du lieu de vie
- Soins de kinésithérapie des patients colonisés en fin de journée ou à des jours spécifiques
- Vaccinations à jour
- Appareils de nébulisation à usage unique lors des déplacements
- Hospitalisation en chambre seule
- Contrôle des facteurs de risque d’infection
- Respect des bonnes pratiques d'hygiène hospitalière