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Histoplasma capsulatum var duboisii

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    Macroscopie :
  • Croissance lente (10 jours jusqu’à 6 semaines)

  • Milieux : Sabouraud avec ou sans cycloheximide, gélose au sang

  • Morphologie des colonies :
    • Sur milieu Sabouraud : contours arrondis
    • Sur gélose sang : lisse

  • Aspect des colonies :
    • Sur milieu Sabouraud : aspect duveteux à verruqueux
    • Sur gélose sang : aspect crémeux

  • Couleur sur milieu Sabouraud :
    • Recto : blanc à beige
    • Verso : pigment jaunâtre à brunâtre

  • Couleur sur gélose sang : crème
    Microscopie : Sur milieu Sabouraud :
    • Filaments mycéliens fins septés
    • 2 types de conidies :
      • Microconidies rondes ou pyriformes insérées directement sur l’hyphe ou via des petits pédicelles
      • Macroconidies rondes de grande taille issues de conidiophores

    • Sur gélose sang :
      • Levures ovales en forme de citron
      • Bourgeonnement unilatéral à base d’implantation étroite
      • Coexistence de grandes et petites levures
    Épidémiologie :
  • Champignon dimorphique :
    • Forme filamenteuse : forme présente à l'état naturel du champignon et in vitro
    • Forme levuriforme : forme parasitaire présente in vivo et après culture sur gélose sang

  • Moisissure tropicale tellurique

  • Répartition : Afrique subsahélienne dont Madagascar

  • Réservoir : inconnu (sol ? guano de chauve-souris ?)

  • Champignon opportuniste

  • Transmission présumée directe par voie respiratoire ou voie transcutanée

  • Facteurs favorisants : longs séjours en zone d'endémie (> 2 ans)

  • Populations à risque d'infection : enfants, habitants des zones rurales

  • Infection à prédominance masculine
    Pathogénicité :
  • Agent de l'histoplasmose africaine
  • Pas de guérison spontanée
  • Réactivation possible des formes dormantes quelques années après la contamination sous un facteur d’immunodépression

  • Atteintes ganglionnaires : adénopathies volumineuses

  • Atteintes cutanées ou sous-cutanées(zones découvertes du corps) : nodules, abcès sous-cutanés, ulcérations, de couleur brune :

  • Atteintes osseuses : ostéites avec abcès des os plats et longs
  • Atteintes respiratoires : rares, évoquent la tuberculose
    Réservé aux laboratoires spécialisés
    Prélèvement :
  • Selon la localisation (prélèvement respiratoire, tubage gastrique, grattage de lésions, pus, sang …)

    Examen direct :
  • Capital, permet l'identification du champignon
  • Après coloration
  • Observation de petites levures à double paroi et à bourgeonnement unilatéral à base d’implantation étroite (levures en forme de 8)

    Culture :
  • Isolement du champignon

    Identification :
  • Aspect macroscopique
  • Aspect microscopique
  • Spectrométrie de masse en cours de développement
  • Séquençage par biologie moléculaire des régions ITS
  • Identification du champignon en parallèle par un examen anatomopathologique des prélèvements profonds
    Diagnostic différentiel :
  • Mycologique : avec Histoplasma capsulatum var capsulatum

  • Clinique : avec la tuberculose
    Éléments de traitement :
  • Traitement antifongique instauré sans attendre le résultat de la culture
  • Traitement de tous les patients atteints pendant 1 an
  • 1ère intention : itraconazole
  • Formes graves : amphotéricine B
  • Éxérèse chirurgicale (rares indications)
  • Fort taux de rechute après traitement antifongique