Bactéries >

Mycobacterium avium

Rounded image Rounded image

Espèces du complexe :
- Mycobacterium avium
- Mycobacterium intracellulare

    Classification :
  • Actinobacteria
  • Actinobacteria
  • Corynebacteriales
  • Mycobacteriaceae
    Examen direct :
  • Après coloration spécifique (Ziehl-Neelsen, auramine = coloration fluorescente)
  • Bacilles acido-alcoolorésistants (BAAR)
  • État frais : immobilité
    Culture :
  • Morphologie :
    • Colonies rondes, jaunes, fines
    Habitat naturel :
  • Environnement (plantes, terre, eaux, aérosols, amibes)
  • Environnement hospitalier ou domestique
  • Flore commensale respiratoire (hypothèse controversée)
    Facteurs de virulence :
  • Formation de biofilms
  • Résistance +++ dans l’environnement, à de fortes et faibles températures
    Épidémiologie :
  • Bactéries les plus fréquemment impliquées dans les infections à mycobactéries atypiques

  • Bactéries opportunistes

  • Transmission :
    • Par voie cutanée (contact avec eau ou poissons contaminés)
    • Par voie respiratoire

  • Facteurs de risque d'infection pulmonaire :
    • Pathologie pulmonaire préexistante (mucoviscidose +++)
    • Personne âgée
    Pathogénicité :
  • Infections disséminées :
    • Sur terrain fragile (immunodépression +++)
    • Principaux organes touchés : appareil digestif, appareil respiratoire
    • Progression rapide vers le décès

  • Infections pulmonaires :
    • Patient non VIH : même tableau clinique que la tuberculose maladie (progression lente)
    • Patients VIH au stade SIDA : progression très rapide (toux, hyperthermie, perte de poids)
    • Critères d’infections pulmonaires à mycobactéries atypiques :
      • Symptomatologie évocatrice
      • Critères radiologiques
      • Au moins 2 prélèvements respiratoires rapprochés positifs et/ou une biopsie positive
    • Lymphadénites (enfants +++) : adénopathie cervicale unilatérale
    Il doit être réalisé dans un laboratoire de sécurité microbiologique de niveau 3
    Prélèvement :
    • Infection pulmonaire : 1 prélèvement le matin si possible, 3 jours d’affilée
      • Tubage gastrique
      • Prélèvements respiratoires : expectorations, aspirations bronchiques, lavages broncho-alvéolaires
    • Infection extrapulmonaire :
      • Liquides de ponction
      • Liquide céphalorachidien
      • Urines (sur 3 jours)
      • Suppurations diverses
      • Sang pour hémocultures (flacons spécifiques)
      • Selles

    Décontamination de l'échantillon :
    • Échantillons : prélèvements respiratoires, selles
    • But : minimiser la contamination du prélèvement par la flore commensale
    • Réactifs à base de soude

    Réalisation de l'examen direct (après centrifugation de l’échantillon)
    Mise en culture :
    • Mycobactéries à croissance lente > 7 jours (Slow Growing Mycobacteria)
    • Respiration : aérobie stricte
    • Milieux sélectifs :
      • Solides : milieu de Lowenstein-Jensen, milieu Coletsos
      • Liquides en flacons d’hémocultures (45 jours d’incubation minimum)
    • Incubation : 30°C, 37°C et 42°C pendant 8 semaines
    Identification :
    • PCR : identification d’espèce
    • Séquençage de l’ARN 16S
    • MALDI-TOF couplé à la spectrométrie de masse (en développement)
    • Antibiogramme réalisé par un laboratoire spécialisé.

    • Résistance inductible aux macrolides
    Traitement curatif :
  • Infections pulmonaires ou disséminées : association de clarithromycine + éthambutol + rifampicine +/- amikacine

  • Lymphadénites de l’enfant :
    • Exérèse chirurgicale
    • Traitement antibiotique inefficace

  • Durée du traitement antibiotique : variable, plusieurs mois
    Prophylaxie :
  • Contrôle de l'immunodépression et des pathologies sous-jacentes
  • Contrôles de la contamination de l’eau potable
  • Respect des bonnes pratiques d'hygiène hospitalière