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Scedosporium apiospermum

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Complexe comprenant 6 espèces :

  • S. apiospermum sensu stricto
  • S. boydii
  • S. cereisporum
  • S. aurantiacum
  • S. dehoogii
  • S. minutisporum

    Macroscopie :
  • Croissance moyennement rapide (2 à 3 jours, colonies caractéristiques en 4 à 5 jours)
  • Milieu : Sabouraud avec ou sans cycloheximide
  • Morphologie des colonies : peu extensives
  • Aspect des colonies : cotonneux à laineux
  • Couleur :
    • Recto : blanc à gris
    • Verso : variable selon l'espèce (incolore à noir)
    Microscopie :
  • Filaments mycéliens : fins, septés, réguliers, irrégulièrement ramifiés

  • Reproduction asexuée :
    • Conidiogenèse de type thallique solitaire : grandes conidies ovoïdes ou pyriformes unicellulaires terminales ou latérales, hyalines à brun foncé, directement portées par des conidiophores courts et cylindriques
    • Conidiogenèse de type blastique annellidique = stade graphium constitué de corémies (concerne certaines souches) :
      • Conidiophores disposées parallèlement les uns par rapport aux autres
      • Sommet des conidiophores : cellules conidiogènes produisant les spores (unicellulaires, hyalines, cylindriques)

    • Reproduction sexuée : stade Pseudoallescheria
      • Sur cultures de 2 à 3 semaines
      • Cléistothèces globuleux bruns (diamètre : 140 à 200µm) contenant de nombreux asques renfermant chacun des ascospores brunes, ovoïdes et unicellulaires
    Épidémiologie :
  • Hyalohyphomycète tellurique
  • Répartition cosmopolite
  • Champignon opportuniste
  • Réservoir : eaux polluées, boues, colonisation de l’arbre respiratoire des patients atteints de mucoviscidose
  • Transmission directe : contact ou inhalation de spores de l'environnement
    Pathogénicité :
  • Scedosporium cereisporum n'est pas pathogène pour l'être humain.

  • Infections post-traumatiques :
    • mycétomes sous-cutanés
    • atteintes ostéo-articulaires (arthrites, ostéomyélites)
    • kératites ou endophtalmies
    • infections disséminées à point de départ pulmonaire (terrain : immunodépression profonde)

  • Infections respiratoires :
    • sinusites
    • mycétomes pulmonaires (terrain : tuberculose pulmonaire)
    • mycoses broncho-pulmonaires ou formes allergiques (terrain : mucoviscidose)
    • infections disséminées à point de départ pulmonaire (terrain : immunodépression profonde)

  • Atteintes cérébrales exceptionnelles
    Prélèvement :
  • Selon la localisation

    Examen direct :
  • Observation de filaments septés hyalins

    Culture :
  • Isolement du champignon

    Identification :
  • Aspect macroscopique
  • Aspect microscopique
  • Spectrométrie de masse
  • Sérodiagnostic par immunoprécipitation ou technique immunoenzymatique (laboratoires spécialisés)
  • Séquençage des régions ITS (gène de la calmoduline ou gène de la ß-tubuline)
    Diagnostic différentiel :
  • Avec Lomentospora prolificans
    Éléments de traitement :
  • Champignon résistant à la plupart des antifongiques actuels
  • Traitement local par un antifongique
  • Traitement systémique en cas de lésions étendues ou disséminées : voriconazole (1ère intention) pouvant être associé à une échinocandine dans les formes graves
  • Contrôle de l'immunodépression sous-jacente

Mise à jour : avril 2024